Енавогліфлозин зменшує тяжкість раннього сепсис-асоційованого гострого пошкодження нирок у мишачій моделі з перев’язуванням і пункцією сліпої кишки

  • Алаа К. Алдахері Факультет фармації, Університет Куфи, Наджаф, Ірак https://orcid.org/0009-0002-8310-0615
  • Алі М. Джанабі Кафедра фармакології та токсикології, Факультет фармації, Університет Куфи, Наджаф, Ірак https://orcid.org/0000-0002-8569-7964
Ключові слова: сепсис. гостре пошкодження нирок. інгібітори натрій-глюкозного котранспортера 2 типу. Енавогліфлозин. перев’язування та пункція сліпої кишки, оксидативний стрес.

Анотація

Сепсис часто ускладнюється гострим пошкодженням нирок (ГПН), у розвитку якого важливу роль відіграють запалення, оксидативний стрес, пошкодження ниркових канальців і загибель клітин. У цьому дослідженні оцінювали здатність енавогліфлозину зменшувати тяжкість ГПН у моделі сепсису, індукованого перев’язуванням і пункцією сліпої кишки.

Методи. Двадцять чотири самці мишей були розподілені на чотири експериментальні групи: псевдооперовані тварини (Sham), перев’язування та пункція сліпої кишки (CLP), CLP із введенням диметилсульфоксиду та CLP із введенням енавогліфлозину. Енавогліфлозин вводили внутрішньоочеревинно в дозі 1 мг/кг за 1 годину до операції CLP. Через 24 години після операції відбирали зразки крові та тканини нирок. Для оцінки функції нирок визначали концентрацію креатиніну в сироватці крові, а в тканині нирок методом імуноферментного аналізу (ІФА) визначали рівні молекули пошкодження нирок-1 (KIM-1), ядерного фактора каппа B (NF-κB), малонового діальдегіду (MDA), каспази-3 та ядерного фактора, пов’язаного з еритроїдним фактором 2 (Nrf2). Також проводили гістологічне дослідження тканини нирок із забарвленням гематоксиліном та еозином і визначали ступінь пошкодження нирок за бальною шкалою.

Результати. У мишей групи CLP концентрація креатиніну сироватки крові була значно вищою, ніж у псевдооперованих тварин (2,240 ± 0,2546 проти 0,4307 ± 0,05516 мг/дл; p < 0,0001). Введення енавогліфлозину тваринам групи CLP супроводжувалось зниженням концентрації креатиніну (1,117 ± 0,1276 проти 2,240 ± 0,2546 мг/дл; p < 0,01). Порівняно з групою CLP, введення енавогліфлозину супроводжувалось значним зниженням у тканині нирок рівня маркера канальцевого пошкодження KIM-1 (359,3 ± 12,30 проти 461,4 ± 18,32 пг/мл; p < 0,001), медіатора запалення NF-κB (844,7 ± 20,09 проти 1429 ± 11,38 пг/мл; p < 0,0001), маркера оксидативного стресу MDA (204,5 ± 18,79 проти 320,6 ± 23,51 нг/мл; p < 0,01) та пов’язаної з апоптозом каспази-3 (7,726 ± 0,4581 проти 10,21 ± 0,5911 нг/мл; p < 0,05). Водночас рівень Nrf2 у тканині нирок був значно вищим у мишей, які отримували енавогліфлозин, порівняно з групою CLP (4383 ± 123,6 проти 3210 ± 117,6 пг/мл; p < 0,0001), що свідчить про посилення антиоксидантної відповіді. За результатами гістологічного дослідження миші, які отримували енавогліфлозин, мали нижчий бал пошкодження ниркової тканини порівняно з тваринами групи CLP [0,0 (0,0–1,0) проти 3,5 (3,0–4,0); p < 0,05].

Висновки. Енавогліфлозин зменшував тяжкість ГПН, що проявлялось зменшенням канальцевого пошкодження, запалення та оксидативного стресу, а також посиленням антиоксидантної відповіді. Подальші дослідження необхідні для уточнення механізмів дії енавогліфлозину та оцінки перспектив його застосування у пацієнтів із сепсисом.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Rudd KE, Johnson SC, Agesa KM, Shackelford KA, Tsoi D, Kievlan DR, et al. Global, regional, and national sepsis incidence and mortality, 1990–2017: analysis for the Global Burden of Disease Study. Lancet. 2020;395(10219):200-11. doi: 10.1016/S0140-6736(19)32989-7.

Evans L, Rhodes A, Alhazzani W, Antonelli M, Coopersmith CM, French C, et al. Surviving sepsis campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock 2021. Intensive Care Med. 2021;47(11):1181-247. doi: 10.1007/s00134-021-06506-y.

Manrique-Caballero CL, Del Rio-Pertuz G, Gomez H. Sepsis-associated acute kidney injury. Crit Care Clin. 2021;37(2):279-301. doi: 10.1016/j.ccc.2020.11.010.

Balkrishna A, Sinha S, Kumar A, Arya V, Gautam AK, Valis M, et al. Sepsis-mediated renal dysfunction: pathophysiology, biomarkers and role of phytoconstituents in its management. Biomed Pharmacother. 2023;165:115183. doi: 10.1016/j.biopha.2023.115183.

Kumar S, Srivastava VK, Kaushik S, Saxena J, Jyoti A. Free radicals, mitochondrial dysfunction and sepsis-induced organ dysfunction: a mechanistic insight. Curr Pharm Des. 2024;30(3):161-8. doi: 10.2174/0113816128279655231228055842.

Yang XR, Wen R, Yang N, Gao Y, Zhang TN. Role of oxidative stress in sepsis: mechanisms, pathways, and therapeutic strategies. J Pharm Anal. 2026;16(4):101452. doi: 10.1016/j.jpha.2025.101452.

Ow CPC, Trask-Marino A, Betrie AH, Evans RG, May CN, Lankadeva YR. Targeting oxidative stress in septic acute kidney injury: from theory to practice. J Clin Med. 2021;10(17):3798. doi: 10.3390/jcm10173798.

Chen Z, Wang H, Hu B, Chen X, Zheng M, Liang L, et al. Transcription factor nuclear factor erythroid 2 p45-related factor 2 (NRF2) ameliorates sepsis-associated acute kidney injury by maintaining mitochondrial homeostasis and improving the mitochondrial function. Eur J Histochem. 2022;66(3):3412. doi: 10.4081/ejh.2022.3412.

Gunne S, Heinicke U, Parnham MJ, Laux V, Zacharowski K, von Knethen A. Nrf2: a molecular target for sepsis patients in critical care. Biomolecules. 2020;10(12):1688. doi: 10.3390/biom10121688.

Lou Y, Shi H, Sha N, Li F, Gu X, Lin H. Ursodeoxycholic acid protects against sepsis-induced acute kidney injury by activating Nrf2/HO-1 and inhibiting NF-κB pathway. BMC Nephrol. 2025;26(1):45. doi: 10.1186/s12882-025-03977-9.

Neuen BL, Young T, Heerspink HJL, Neal B, Perkovic V, Billot L, et al. SGLT2 inhibitors for the prevention of kidney failure in patients with type 2 diabetes: a systematic review and meta-analysis. Lancet Diabetes Endocrinol. 2019;7(11):845-54. doi: 10.1016/S2213-8587(19)30256-6.

Gong C, Shen SC, Zhang K, Zhou L, Shen JJ, Zhao JY, et al. Association of sodium-glucose cotransporter 2 inhibitors with cardiovascular outcome and safety events: a meta-analysis of randomized controlled clinical trials. Front Cardiovasc Med. 2022;9:926979. doi: 10.3389/fcvm.2022.926979.

Stepanova N. SGLT2 inhibitors in peritoneal dialysis: a promising frontier toward improved patient outcomes. Ren Replace Ther. 2024;10(1):5. doi: 10.1186/s41100-024-00523-5.

Chi PJ, Lee CJ, Hsieh YJ, Lu CW, Hsu BG. Dapagliflozin ameliorates lipopolysaccharide-related acute kidney injury in mice with streptozotocin-induced diabetes mellitus. Int J Med Sci. 2022;19(4):729-39. doi: 10.7150/ijms.69031.

Alrufaie SH, Janabi AM. Ertugliflozin mitigates liver damage during sepsis: evidence from a murine model. Int J Appl Pharm. 2026;18(1):617-24. doi: 10.22159/ijap.2026v18i1.56581.

Pang M, Lee J, Choi MK, Song IS. Pharmacokinetics and tissue distribution of enavogliflozin in mice using a validated liquid chromatography-tandem mass spectrometry method. Appl Sci. 2025;15(3):1445. doi: 10.3390/app15031445.

Choi YS, Na J, Park SY, Cho JM, Jeong Y, Hwang JG. Pharmacokinetics and safety of fixed-dose versus separate enavogliflozin/gemigliptin combinations, and food effect on enavogliflozin in healthy Korean subjects. Clin Transl Sci. 2025;18(10):e70376. doi: 10.1111/cts.70376.

Kim MS, Song YK, Choi JS, Ji HY, Yang E, Park JS, et al. Physiologically based pharmacokinetic modelling to predict pharmacokinetics of enavogliflozin, a sodium-dependent glucose transporter 2 inhibitor, in humans. Pharmaceutics. 2023;15(3):942. doi: 10.3390/pharmaceutics15030942.

Pham PTM, Nguyen G, Park SY, Lai TL, Choi DH, Hong J, et al. Enavogliflozin, an SGLT2 inhibitor, improves nonalcoholic steatohepatitis induced by high-fat, high-cholesterol diet. Diabetes Metab J. 2026;50(1):165-77. doi: 10.4093/dmj.2024.0259.

Kannan SK, Kim CY, Heidarian M, Berton RR, Jensen IJ, Griffith TS, et al. Mouse models of sepsis. Curr Protoc. 2024;4(3):e997. doi: 10.1002/cpz1.997.

Nakao Y, Mori M, Mori Y, Bonventre JV. SGLT2 inhibitors and acute kidney injury. Nephrol Dial Transplant. 2026;41(2):243-54. doi: 10.1093/ndt/gfaf132.

Li B, Yu M, Pan X, Ren C, Peng W, Li X, et al. Artesunate reduces serum lipopolysaccharide in cecal ligation/puncture mice via enhanced LPS internalization by macrophages through increased mRNA expression of scavenger receptors. Int J Mol Sci. 2014;15(1):1143-61. doi: 10.3390/ijms15011143.

Pang M, Jeon SY, Choi MK, Jeon JH, Ji HY, Choi JS, et al. Pharmacokinetics and tissue distribution of enavogliflozin in mice and rats. Pharmaceutics. 2022;14(6):1210. doi: 10.3390/pharmaceutics14061210.

Aboismaiel MG, Amin MN, Eissa LA. Renoprotective effect of a novel combination of 6-gingerol and metformin in high-fat diet/streptozotocin-induced diabetic nephropathy in rats via targeting miRNA-146a, miRNA-223, TLR4/TRAF6/NLRP3 inflammasome pathway and HIF-1α. Biol Res. 2024;57(1):47. doi: 10.1186/s40659-024-00527-9.

Hwang SK, Morin J, Houle C, Ravindra KC, Newman L, Qian J, et al. A rat model of immunologic and hypertensive kidney injury. Sci Rep. 2026;16(1):2415. doi: 10.1038/s41598-025-23316-0.

Qassam H, Janabi AM, Gaen KK, Hadi NR. Dimethyl fumarate attenuates liver injury in a mouse model of cecal ligation and puncture by modulating inflammatory, angiogenic and pyroptotic pathways. BMC Pharmacol Toxicol. 2025;26(1):134. doi: 10.1186/s40360-025-00968-2.

Kingir ZB, Özdemir Kumral ZN, Cam ME, Cilingir ÖT, Şekerler T, Ercan F, et al. Effects of dapagliflozin in experimental sepsis model in rats. Ulus Travma Acil Cerrahi Derg. 2019;25(3):213-21. doi: 10.5505/tjtes.2018.82826.

Ala M, Khoshdel MRF, Dehpour AR. Empagliflozin enhances autophagy, mitochondrial biogenesis, and antioxidant defense and ameliorates renal ischemia/reperfusion in nondiabetic rats. Oxid Med Cell Longev. 2022;2022:1197061. doi: 10.1155/2022/1197061.

Bazargani B, Moghtaderi M. New biomarkers in early diagnosis of acute kidney injury in children. Avicenna J Med Biotechnol. 2022;14(4):264-69. doi: 10.18502/ajmb.v14i4.10478.

Al-killidar SM, Muhammad-Baqir BM. Empagliflozin attenuates inflammation and myocardial injury in a murine model of sepsis. Babcock Univ Med J. 2025;8(2):217-25. doi: 10.38029/babcockuniv.med.j..v8i2.1021.

Han J, Song J, Jung ES, Choi JW, Ji HY, Mook-Jung I. SGLT2 inhibition by enavogliflozin significantly reduces Aβ pathology and restores cognitive function via upregulation of microglial AMPK signaling in 5XFAD mouse model of Alzheimer’s disease. Aging Cell. 2025;24(8):e70101. doi: 10.1111/acel.70101.

Wu Z, Deng J, Zhou H, Tan W, Lin L, Yang J. Programmed cell death in sepsis-associated acute kidney injury. Front Med (Lausanne). 2022;9:883028. doi: 10.3389/fmed.2022.883028.


Переглядів анотації: 2
Завантажень PDF: 0
Опубліковано
2026-08-28
Як цитувати
Алдахері, А. К., & Джанабі, А. М. (2026). Енавогліфлозин зменшує тяжкість раннього сепсис-асоційованого гострого пошкодження нирок у мишачій моделі з перев’язуванням і пункцією сліпої кишки. Український Журнал Нефрології та Діалізу, (3(91), 9-17. https://doi.org/10.31450/ukrjnd.3(91).2026.02

Розділ
Оригінальні наукові роботи