Морфологічний патерн нирок щурів з інфравезикальною обструкцією після введення біологічно активних композицій, що містять нейротрофічні фактори

Ключові слова: морфологічні показники, інфравезікальна обструкція, обструктивна уропатія, нирковий фіброз, спiнальний ганглій, мантійні гліоцити, кондиційоване середовище.

Анотація

Резюме.  Метою дослідження було вивчення морфологічних особливостей нирок після внутрішньоочеревинного введення біологічно активних композицій (БАК) у щурів з інфравезикальною обструкцією (ІВО).

Методи. ІВО була відтворена шляхом лігування. БАК вводили внутрішньочеревно протягом 10 діб. Визначали морфометричні показники нирок шляхом вивчення їх структури (площу ниркового тільця, площу клубочка, площу порожнини капсули клубочка, зовнішній та внутрішній діаметри канальців, канальцьовий індекс, зовнішній діаметр та площу просвіту судин). Піддослідні тварини були розподілені на групи: 1 – інтактний контроль (К); 2 – введення "кортексіну"; 3 – кондиційоване середовище культури нативних мантійних гліоцитів (КСКНМГ); 4 – базове середовище культивування (БСК); 5 – без лікування.

Результати. БАК, отримані від культури нативних мантійних гліоцитів (МГ) та БСК, брали участь у ремоделюванні структури нирок, яка змінюєтьсяь під час ІВО. Виявлено збільшення площі ниркових тілець у 2-й, 4-й та 5-й групах на 42,3%, 193,9% та 72,3% відповідно, порівняно з контрольною групою. У той же час ступінь гіпертрофії ниркового тільця у 3-й групі була мінімальною та наближалася до контрольних значень. У тварин 3-ї, 4-ї та 5-ї груп площа клубочків збільшилася відповідно на 35,4 %, 181,1 % та 34 % порівняно з контрольною групою. Однак різниця в індексі між 5-ю групою  та тваринами, які отримували БАК, була несуттєвою, за винятком 4-ї групи. Площа простору капсули Боумена збільшилася у 2-й, 4-й та 5-й групах на 117,6%, 235,8% та 186%, відповідно, порівняно з контролем. Цікаво, що значення 1-ї та 3-ї груп збігалися, але відрізнялися від 5-ї групи. Найнижчі показники зовнішнього та внутрішнього діаметрів ниркових канальців були визначені у 3-й групі, які були близькі до показників контрольної групи, але вірогідно відрізнялися від показників інших груп. У 3-й та 4-й групах виявлено підвищення тубулярного індексу (у 1,35 та 1,4 рази) порівняно з іншими групами. Найнижчі показники виявлені у 2-й та 5-й групах. Максимальні значення середнього діаметра та площі просвіту судини визначені у 3-й та 4-й групах, мінімальні у 5-й. Слід зазначити, що показники цих груп значно відрізнялися від 5-ї групи.

Висновки. Результати експерименту свідчать про можливість зменшення явищ гломерулосклерозу, канальцевої атрофії та ниркового інтерстиціального фіброзу (НІФ), а також часткового відновлення морфологічної структури нирки щурів на тлі ІВО після введення КСКНМГ та меншою мірою БСК за рахунок різноспрямованої дії нейротрофічних факторів (НФ).

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Zaikova N, David V, Nigulianu P, Ciavdar N, Nedbailo E. Clinicopathomorphologic changes in rat kidneys in non-infected reflux-nephropathy after experimental simulations of urethral stenosis. The Journal Medical Courier. 2010;5(317):65-71. Available from: http://moldmedjournal.md/wp-content/uploads/2016/09/9.pdf.

Ucero AC, Gonçalves S, Benito-Martin A, Santamaría B, Ramos AM, Berzal S, Ruiz-Ortega M, Egido J, Ortiz A. Obstructive renal injury: from fluid mechanics to molecular cell biology. Open Access J Urol. 2010 Apr 22; 2:41-55. doi: 10.2147/rru.s6597.

Brigstock DR. Extracellular vesicles in organ fibrosis: mechanisms, therapies and diagnostics. Cells. MDPI AG; 2021 Jun 25; 10(7):1596. doi: 10.3390/cells10071596.

Truong LD, Gaber L, Eknoyan G. Obstructive uropathy. Contrib Nephrol. 2011;169:311-326. doi: 10.1159/000314578.

Shirazi M, Soltani MR, Jahanabadi Z, Abdollahifar MA, Tanideh N, Noorafshan A. Stereological comparison of the effects of pentoxifylline, captopril, simvastatin and tamoxifen on kidney and bladder structure after partial urethral obstruction in rats. Korean J Urol. 2014 Nov; 55(11):756-63. doi: 10.4111/kju.2014.55.11.756.

Li S, Wang Y, Wang Z, Chen L, Zuo B, Liu C, et al. Enhanced renoprotective effect of GDNF-modified adipose-derived mesenchymal stem cells on renal interstitial fibrosis. Stem Cell Res Ther. Springer Science and Business Media LLC; 2021 Jan 7; 12(1):1-12. doi: 10.1186/s13287-020-02049-z.

Liao C, Chen G, Yang Q, Liu Y, Zhou T. Potential therapeutic effect and mechanisms of mesenchymal stem cells-extracellular vesicles in renal fibrosis. Front Cell Dev Biol. Frontiers Media SA; 2022 Mar 11; 10: 824752. doi: 10.3389/fcell.2022.824752.

Lee SA, Yoo TH. Therapeutic application of extracellular vesicles for various kidney diseases: a brief review. BMB Reports. Korean Society for Biochemistry and Molecular Biology - BMB Reports; 2022 Jan 31;55(1):3-10. doi: 10.5483/BMBRep.2022.55.1.141.

Maeshima A, Nakasatomi M, Nojima Y. Regenerative Medicine for the Kidney: Renotropic Factors, Renal Stem/Progenitor Cells, and Stem Cell Therapy. BioMed Research International. Hindawi Limited; 2014; 2014:1-10. doi:10.1155/2014/595493.

Aparicio-Trejo OE, Aranda-Rivera AK, Osorio-Alonso H, Martínez-Klimova E, Sánchez-Lozada LG, Pedraza-Chaverri J, et al. Extracellular vesicles in redox signaling and metabolic regulation in chronic kidney disease. Antioxidants. MDPI AG; 2022 Feb11;11(2):356. doi: 10.3390/antiox11020356

Sun DZ, Abelson B, Babbar P, Damaser MS. Harnessing the mesenchymal stem cell secretome for regenerative urology. Nat Rev Urol. Springer Science and Business Media LLC; 2019 Mar 28; 16(6):363-75. doi: 10.1038/s41585-019-0169-3.

Kim MW, Ko IK, Atala A, Yoo JJ. Cell-derived secretome for the treatment of renal disease. Child Kidney Dis. Korean Society of Pediatric Nephrology; 2019 Oct 30; 23(2):67-76. doi. 10.3339/jkspn.2019.23.2.67.

Birtwistle L, Chen X-M, Pollock C. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles to the rescue of renal injury. Int J Mol Sci. MDPI AG; 2021 Jun 20; 22(12):6596. doi: 10.3390/ijms22126596.

Wang Z, Li S, Wang Y, Zhang X, Chen L, Sun D. GDNF enhances the anti-inflammatory effect of human adipose-derived mesenchymal stem cell-based therapy in renal interstitial fibrosis. Stem Cell Research. Elsevier BV; 2019 Dec; 41:101605. doi: 10.1016/j.scr.2019.101605.

Bruno S, Porta S, Bussolati B. Extracellular vesicles in renal tissue damage and regeneration. Eur J Pharmacol. Elsevier BV; 2016 Nov; 790:83-91. doi: 10.1016/j.ejphar.2016.06.058.

 Lee SA, Choi C, Yoo T-H. Extracellular vesicles in kidneys and their clinical potential in renal diseases Kidney Res Clin Pract. 2021 April 13; 40(2):194-207. doi: 10.23876/j.krcp.20.209.

Miyasaki DM, Senegaglia AC, de Moura SAB, Leitolis A, Capriglione LGA, Fracaro L, et al. Treatment of chronic kidney disease with extracellular vesicles from mesenchymal stem cells and CD133+ expanded cells: a comparative preclinical analysis. Int J Mol Sci. MDPI AG; 2022 Feb 25; 23(5):2521. doi :10.3390/ijms23052521.

Tran C, Damaser MS. Stem cells as drug delivery methods: application of stem cell secretome for regeneration. Adv Drug Deliv Rev. Elsevier BV; 2015 Mar; 82-83:1-11. doi: 10.1016/j.addr.2014.10.007.

Tsui CC, Shankland SJ, Pierchala BA. Glial cell line–derived neurotrophic factor and its receptor ret is a novel ligand-receptor complex critical for survival response during podocyte injury. J Am Soc Nephrol. 2006; 17(6):1543-52. doi: 10.1681/asn. 2005080835.

Jha MK, Seo M, Kim J-H, Kim B-G, Cho J-Y, Suk K. The secretome signature of reactive glial cells and its pathological implications. Biochim Biophys Acta Proteins Proteom. Elsevier BV; 2013 Nov; 1834(11):2418-28. doi:10.1016/j.bbapap.2012.12.006.

Alі SG, Sidorenko ОS, Bozhok GА. Influence of nutrient medium composition on the morphological characteristics of culture of dorsal root ganglion cells of neonatal piglets. Visnik Harkivskogo Nacionalnogo Universitetu Imeni V N Karazina Seria Biologia. 2018;30(30):49-59. doi:10.26565/2075-5457-2018-30-6. [In Ukrainian].

Zhang N, Ma L, Zhang J, Chen J. Improved model for the establishment and evaluation of detrusor overactivity in female Wistar rats. International braz j urol. FapUNIFESP (SciELO); 2014 Jun; 40(3):414-22. doi: 10.1590/s1677-5538.ibju.2014.03.17.

Shavlovskaya OA. Clinical efficacy of neuropeptides in cerebrovascular pathology. Zhurnal nevrologii i psikhiatrii im SS Korsakova [Internet]. Media Sphere Publishing Group; 2016; 116(8):88-93. [In Russian].

Bahrii MM, Dibrova VA, Popadynets OH, Hryshchuk MI. Metodyky morfolohichnykh doslidzhen: monohrafiia. Vinnytsia: Nova knyha; 2016. 328 p. [In Ukrainian].

Avtandilov GG. Osnovy kolichestvennoj patologicheskoj anatomii. M.: Medicina; 2002. 240 p. [In Russian].

Priante G, Gianesello L, Ceol M, Del Prete D, Anglani F. Cell death in the kidney. Int J Mol Sci. 2019 Jul; 20(14):3598. doi: 10.3390/ijms20143598.

Nowak N, Yamanouchi M, Satake E. The Nephroprotective properties of extracellular vesicles in experimental models of chronic kidney disease: a systematic review. Stem Cell Rev Rep. Springer Science and Business Media LLC; 2021 Jun 10; 18(3):902-32. doi: 10.1007/s12015-021-10189-9.

Dinescu S, Dobranici A, Tecucianu R, Selaru A, Balahura R, Ignat S, et al. Exosomes as part of the human adipose-derived stem cells secretome-opening new perspectives for cell-free regenerative applications. Cell Biology and Translational Medicine, Volume 11. Springer International Publishing; 2020;139-63. doi: 10.1007/5584_2020_588.

Lommatzsch M, Quarcoo D, Schulte-Herbrüggen O, Weber H, Virchow JC, Renz H, et al. Neurotrophins in murine viscera: a dynamic pattern from birth to adulthood. Int J Dev Neurosci. Wiley; 2005 Jun 22; 23(6):495-500. doi: 10.1016/j.ijdevneu.2005.05.009.

Globa V, Samburg Y, Bozhok G, Legach E. Biochemical blood parameters of rats with infravesical obstruction with the introduction of biologically active compositions containing neurotrophic factors. ЕМ. 2021 Sep. 30 [cited 2022 Jun. 16]; 16(4):115-20. doi:10.22141/2224-0586.16.4.2020.207940. [In Ukrainian].

Globa V, Bondarenko T, Bozhok G, Samburg Y, Legach E, et al. Biologically active compositions containing neurotrophic factors change the contractile activity of detrusor of rats with infravesical obstruction. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. National Academy of Sciences of Ukraine (Co. LTD Ukrinformnauka); 2020 Jun 30; 30(2):188-98. doi: 10.15407/cryo30.02.188.

Nesteruk H, Ustichenko V, Alabedalkarim N, Padalko V, Protsenko O, et al. Impact of dorsal root ganglia cryoextract on histological steatures in dices and contractility of uterus in differently aged rats. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. National Academy of Sciences of Ukraine (Co. LTD Ukrinformnauka) (Publications); 2021 Sep 25; 31(3):258-67.  doi: 10.15407/cryo31.03.258.

Globa V, Bozhok G, Legach E. Morphological parameters of bladder rats with infravesical obstruction with the introduction of biologically active compositions. Journal of Pharmacy and Pharmacology. David Publishing Company; 2020 Oct 28; 8(11): 327-33. doi: 10.17265/2328-2150/2020.11.001.


Переглядів анотації: 493
Завантажень PDF: 14448
Опубліковано
2022-07-31
Як цитувати
Globa, V., Bozhok, G., Legach, E., Chyzh, M., Samburg, Y., & Godlevska, O. (2022). Морфологічний патерн нирок щурів з інфравезикальною обструкцією після введення біологічно активних композицій, що містять нейротрофічні фактори. Український Журнал Нефрології та Діалізу, (3(75), 13-21. https://doi.org/10.31450/ukrjnd.3(75).2022.02

Розділ
Оригінальні наукові роботи