Вплив супернатанту Lactobacillus на експресію генів, асоційованих з роїнням Proteus mirabilis, ізольованого від пацієнтів з інфекціями сечової системи

  • Мутанна Мувафак Абдулла Кафедра біології, факультет природничих наук, Багдадський університет, Багдад, Ірак https://orcid.org/0009-0003-1381-1822
  • Бахаа Абдулла Лафтаах Аль-Рубаї Кафедра біології, факультет природничих наук, Багдадський університет, Багдад, Ірак https://orcid.org/0000-0003-4546-1815
Ключові слова: Proteus mirabilis, Lactobacillus, роїння, інфекції сечової системи.

Анотація

Ізоляти Proteus mirabilis інтенсивно досліджуються через їхню здатність викликати інфекції сечової системи (ІСС) та властивісь роїння, хоча про це явище мало що відомо. Пробіотичні види Lactobacillus вивчаються в усьому світі як терапевтичні та профілактичні засоби проти бактеріальних інфекцій. У цьому дослідженні було вивчено супернатанти Lactobacillus як потенційний новий засіб лікування ІСС, викликаних Proteus mirabilis. Крім тестування антимікробної та анти-роїльної активності, дослідження також мало на меті визначити генетичні механізми, які лежать в основі спостережуваних фенотипічних змін.

Методи. Загалом було зібрано 150 зразків сечі від пацієнтів з ІСС. Пряме культивування проводили шляхом нанесення зразків на диференціальні середовища. РНК була екстрагована та очищена з бактеріальних ізолятів, після чого за допомогою зворотної транскрипції та кількісної ПЛР було оцінено експресію генів, асоційованих із роїнням. Експресію генів оцінювали відносно референсного гена для того, щоб з'ясувати, як пробіотики регулюють роїльну поведінку на генетичному рівні.

Результати. ІСС діагностовано у 50 чоловіків (33,33%) і 100 жінок (66,66%) різного віку. Proteus mirabilis був визначений у 30 (20%) із 150 зразків. Резистентність була виявлена в 25 (83,33%) ізолятів до азитроміцину та амоксициліну/клавуланової кислоти, і в 22 (73,33%) ізолятів до меропенему. Кількісна ПЛР показала значні зміни в експресії чотирьох генів, асоційованих із роїнням (rsbA, umoD, ZapA та FliL). Ген rsbA продемонстрував підвищення рівня експресії, тоді як в іншій пробі спостерігалося зниження. Ген umoD продемонстрував найбільші зміни, при цьому в деяких випадках експресія подвоїлася. Експресія гена ZapA збільшилася найбільше, майже потроївшись в одній з проб. Експресія FliL також зросла в декількох ізолятах. Активність роєння позитивно корелювала з рівнями експресії генів rsbA (r = 0,8, p = 0,009), umoD (r = 0,635, p = 0,045), ZapA (r = 0,942, p = 0,001) та FliL (r = 0,894, p = 0,001).

Висновки. Представлене дослідження демонструє складну генетичну мережу, яка регулює роїльну мотильність Proteus mirabilis та припускає, що супернатанти Lactobacillus acidophilus можуть модифікувати експресію генів і бактеріальну рухливість, що потенційно може сприяти лікуванню ІСС.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Morgenstein RM, Rather PN. Role of the Umo proteins and the Rcs phosphorelay in the swarming motility of the wild type and an O-antigen (waaL) mutant of Proteus mirabilis. J Bacteriol. 2012;194(3):669–76. doi: 10.1128/jb.06047-11.

Artero-López J, Gutiérrez-Soto B, Expósito Ruiz M, Sorlozano Puerto A, Navarro Marí JM, Gutiérrez Fernández J. Etiología de las infecciones urinarias en nuestra área sanitaria y perfil de sensibilidad de los uropatógenos más frecuentes. 2021; Arch. Esp. Urol. [Internet]. 2021; 74 (2): 197-207. Available from: https://digibug.ugr.es/handle/10481/90512.

Ridha Abbas Al-Fahham H, Raoof Kareem K. Molecular study of urease ureR gene of Proteus mirabilis isolated from urinary tract infections, Najaf Iraq. Arch Razi Inst. 2022;77(3):1257–60. doi: 10.22092/ARI.2022.357465.2042.

Yuan F, Huang Z, Yang T, Wang G, Li P, Yang B, et al. Pathogenesis of Proteus mirabilis in catheter-associated urinary tract infections. Urol Int. 2021;105(5–6):354–61. doi: 10.1159/000514097.

Salvetti E, O’Toole PW. The genomic basis of lactobacilli as health-promoting organisms. Microbiol Spectr. 2017;5(3):10–1128. doi: 10.1128/microbiolspec.bad-0011-2016.

Wasfi R, Abd El‐Rahman OA, Zafer MM, Ashour HM. Probiotic Lactobacillus sp. inhibit growth, biofilm formation and gene expression of caries‐inducing Streptococcus mutans. J Cell Mol Med. 2018;22(3):1972–83. doi: 10.1111/jcmm.13496.

Colautti A, Orecchia E, Comi G, Iacumin L. Lactobacilli, a Weapon to Counteract Pathogens through the Inhibition of Their Virulence Factors. J Bacteriol. 2022; 204(11):e0027222. doi: 10.1128/jb.00272-22.

Piewngam P, Zheng Y, Nguyen TH, Dickey SW, Joo HS, Villaruz AE, et al. Pathogen elimination by probiotic Bacillus via signalling interference. Nature. 2018;562(7728):532–7. doi: 10.1038/s41586-018-0616-y.

Scavone P, Iribarnegaray V, González MJ, Navarro N, Caneles-Huerta N, Jara-Wilde J, et al. Role of Proteus mirabilis flagella in biofilm formation. Role of Rev Argent Microbiol. 2023;55(3):226–34. doi: 10.1016/j.ram.2023.01.005.

Emad M, Alhammer AH, Mohammed RK, Lafta FM. SYNERGISTIC EFFECTS OF NEEM OIL AND GENTAMICIN ON PSEUDOMONAS AERUGINOSA VIA PHZM GENE DOWNREGULATION: A COMPREHENSIVE REVIEW. J Microbiol Biotechnol food Sci. 2024;e11095–e11095. doi: 10.55251/jmbfs.11095.

Schaffer JN, Pearson MM. Proteus mirabilis and Urinary Tract Infections. Microbiol Spectr. 2015;3(5). doi: 10.1128/microbiolspec.UTI-0017-2013.

Armbruster CE, Mobley HLT. Merging mythology and morphology: the multifaceted lifestyle of Proteus mirabilis. Nat Rev Microbiol. 2012;10(11):743–54. doi: 10.1038/nrmicro2890.

Sun Y, Wen S, Zhao L, Xia Q, Pan Y, Liu H, et al. Association among biofilm formation, virulence gene expression, and antibiotic resistance in Proteus mirabilis isolates from diarrhetic animals in Northeast China. BMC Vet Res. 2020;16:1–10. doi: 10.1186/s12917-020-02372-w.

Liu L, Dong Z, Ai S, Chen S, Dong M, Li Q, et al. Virulence-related factors and antimicrobial resistance in Proteus mirabilis isolated from domestic and stray dogs. Front Microbiol. 2023;14:1141418. doi: 10.3389/fmicb.2023.1141418.

Khodadadian R, Rahdar HA, Javadi A, Safari M, Khorshidi A. Detection of VIM-1 and IMP-1 genes in Klebsiella pneumoniae and relationship with biofilm formation. Microb Pathog. 2018;115:25–30. doi: 10.1016/j.micpath.2017.12.036.

Isaev Yu. M, Semashkin NM, Kalenkov SA. Sau fheu. Specification of particle movement in a spiral-screw element. Sustain Dev. 2015;8(3):234–244.

Murillo JI, Encarnación-Dimayuga R, Malmstrøm J, Christophersen C, Franzblau SG. Antimycobacterial flavones from Haplopappus sonorensis. Fitoterapia. 2003;74(3):226–30. doi:10.1016/S0367-326X(03)00033-9.

Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. CLSI Approved Standard M100-S15. Clinical and Laboratory Standards Institute W. Clinical and Laboratory Standards Institute. [Internet]. 2018;8(4). Available from: https://www.scirp.org/reference/referencespapers?referenceid=2267872.

Aygül A, Öztürk İ, Çilli FF, Ermertcan Ş. Quercetin inhibits swarming motility and activates biofilm production of Proteus mirabilis possibly by interacting with central regulators, metabolic status or active pump proteins. Phytomedicine. 2019;57:65–71. doi: 10.1016/j.phymed.2018.12.014.

Santos ACC, Malta SM, Dantas RCC, Coelho Rocha ND, Ariston de Carvalho Azevedo V, Ueira-Vieira C. Antimicrobial activity of supernatants produced by bacteria isolated from Brazilian stingless bee’s larval food. BMC Microbiol. 2022;22(1):127. doi: 10.1186/s12866-022-02548-4.

Rammelsberg M, Radler F. Antibacterial polypeptides of Lactobacillus species. J Appl Bacteriol. 1990;69(2):177–84. doi: 10.1111/j.1365-2672.1990.tb01507.x.

Al-Ezzy AIA, Al-Azawi SA, Algburi A. Multidrug Resistant Behavior Of Proteus mirabilis Isolated From patients with Urinary Tract Infections. Diyala J Vet Sci. [Internet]. 2023;1(1):1–15. Available from: https://djvs.uodiyala.edu.iq/index.php/djvs/article/view/92.

AL-Jubouri SS, Shami AM. Molecular Detection of Cephalosporin Resistance Genes in Escherichia coli Isolated from Urinary Tract Infections in Baghdad Hospitals. Iraqi J Biotechnol. [Internet]. 2022;21(2):145–52. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/489.

Alsamarai AM, Khorshed SA, Ali H. Urinary tract infection in female in Kirkuk city, Iraq: Association between risk factors and bacterial type. Our Dermatology Online. 2017;8(3):242. doi: 10.7241/ourd.20173.72.

Magliano E, Grazioli V, Deflorio L, Leuci AI, Mattina R, Romano P, et al. Gender and age‐dependent etiology of community‐acquired urinary tract infections. Sci World J. 2012;2012(1):349597. doi: 10.1100/2012/349597.

Ansari A, Son D, Hur YM, Park S, You YA, Kim SM, et al. Lactobacillus probiotics improve vaginal dysbiosis in asymptomatic women. Nutrients. 2023;15(8):1862. doi: 10.3390/nu15081862.

Tabatabaei A, Ahmadi K, Shabestari AN, Khosravi N, Badamchi A. Virulence genes and antimicrobial resistance pattern in Proteus mirabilis strains isolated from patients attended with urinary infections to Tertiary Hospitals, in Iran. Afr Health Sci. 2021;21(4):1677–84. doi: 10.4314/ahs.v21i4.22.

Khudhur Mohammad T, Zuhir LW, Jasim LIA. Detection of some Bacterial Uropathogens in Male Students at the Institute of Medical Technology/Al-Mansour. J Al-Ma’moon Coll. 2017;(29).

Al-Nabhani NA, Shami AM. Molecular Study of Carbapenem Resistance Genes in Proteus mirabilis Isolated from Clinical Samples in Baghdad Hospitals. Iraqi J Biotechnol. [Internet]. 2023;22(1):154-162. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/583/449.

Najim HT, Farhan AA, Athab AM. Bacteriological Study of the Bacteria Cause Urinary Tract Infection of Patients Admitted to Cardiac Care Unite a Baqubah General Teaching Hospital. 2018; 14(1):73-83. doi: 10.26505/DJM.14013610829.

Maharaul HH, Mehta F, Shah K, Asokan AP. A Clinico Microbiological Profile of Diabetic Foot Patients. Medico-legal Updat. 2021;21(2):632-638. doi: 10.37506/mlu.v21i2.2753.

Al-obaidi SA, Al-Hashimy AB. Molecular screening for luxs and pm1 virulence genes of Proteus mirabilis isolated from Iraqi urinary tract infection patients. Iraqi J Biotechnol. [Internet]. 2022;21(2):499–504. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/524.

Stepanova N. How Advanced Is Our Understanding of the Role of Intestinal Barrier Dysfunction in the Pathogenesis of Recurrent Urinary Tract Infections. Front Pharmacol. 2022;13:780122. doi: 10.3389/fphar.2022.780122.

Martins AM, Marto JM, Johnson JL, Graber EM. A review of systemic minocycline side effects and topical minocycline as a safer alternative for treating acne and rosacea. Antibiotics. 2021;10(7):757. doi: 10.3390/antibiotics10070757.

Mohsin MR, Al-Rubaii BAL. Bacterial growth and antibiotic sensitivity of Proteus mirabilis treated with anti-inflammatory and painkiller drugs. Biomedicine. 2023;43(2):728–34. doi: 10.51248/.v43i02.2693.

Al-Jumaily E, Zgaer SH. Multidrug resistant Proteus mirabilis isolated from urinary tract infection from different hospitals in Baghdad City. Int J Curr Microbiol App Sci. 2016;5(9):390–399. doi: 10.20546/ijcmas.2016.509.041.

Shaaban M, Abd El-Rahman OA, Al-Qaidi B, Ashour HM. Antimicrobial and antibiofilm activities of probiotic Lactobacilli on antibiotic-resistant Proteus mirabilis. Microorganisms. 2020;8(6):960. doi: 10.3390/microorganisms8060960.

Goudarzi L, Kermanshahi RK, Mousavinezhad Z, Dallal MMS. Antimicrobial and Anti-Swarming Effects of Bacteriocins and Biosurfactants from Probiotic Bacterial Strains against Proteus spp. J Med Bacteriol. [Internet]. 2016;5(5–6):1–12. Available from: https://jmb.tums.ac.ir/index.php/jmb/article/view/268.

Basuino L, Jousselin A, Alexander JAN, Strynadka NCJ, Pinho MG, Chambers HF, et al. PBP4 activity and its overexpression are necessary for PBP4-mediated high-level β-lactam resistance. J Antimicrob Chemother. 2018;73(5):1177–80. doi: 10.1093/jac/dkx531.

de Sousa K, van Etten J, Neby M, Solberg SØ. Climate variability indices for ecological and crop models in R: the climatrends package. J Open Source Softw. 2023; 8(85), 4405. doi: 10.21105/joss.04405.

Manos J, Belas R. The genera proteus, providencia, and morganella. Prokaryotes. 2006;6:245–69. doi: 10.1007/0-387-30746-x_12.

Diao Q, Hou C. Does nonreproductive swarming adapt to pathogens? PLoS Pathog. 2018;14(1):e1006742. doi: 10.1371/journal.ppat.1006742.

Bessaiah H, Anamalé C, Sung J, Dozois CM. What flips the switch? Signals and stress regulating extraintestinal pathogenic Escherichia coli type 1 fimbriae (pili). Microorganisms. 2021;10(1):5. doi: 10.3390/microorganisms10010005.

Nepper JF, Lin YC, Weibel DB. Rcs phosphorelay activation in cardiolipin-deficient Escherichia coli reduces biofilm formation. J Bacteriol. 2019; 201(9):e00804-18. doi: 10.1128/jb.00804-18.

Yang X, Sun S, Chen Q, Zhang Z, Wang J, Liu Y, et al. A polysaccharide of ganoderma lucidum enhances antifungal activity of chemical fungicides against soil-borne diseases of wheat and maize by induced resistance. Agriculture. 2022;12(1):55. doi: 10.3390/agriculture12010055.

Schaffer JN, Pearson MM. Proteus mirabilis and urinary tract infections. In: Urinary Tract Infections: Mol Pathog Clin Manag. 2017;383–433. doi: 10.1128/9781555817404.ch17.

Cusick K, Lee YY, Youchak B, Belas R. Perturbation of FliL interferes with Proteus mirabilis swarmer cell gene expression and differentiation. J Bacteriol. 2012;194(2):437–47. doi: 10.1128/jb.05998-11.

Pearson MM, Rasko DA, Smith SN, Mobley HLT. Transcriptome of swarming Proteus mirabilis. Infect Immun. 2010;78(6):2834–45. doi: 10.1128/iai.01222-09.

Little K, Tipping MJ, Gibbs KA. Swarmer cell development of the bacterium Proteus mirabilis requires the conserved enterobacterial common antigen biosynthesis gene rffG. J Bacteriol. 2018;200(18):10–1128. doi: 10.1128/jb.00230-18.

Morgenstein RM, Szostek B, Rather PN. Regulation of gene expression during swarmer cell differentiation in Proteus mirabilis. FEMS Microbiol Rev. 2010;34(5):753–63. doi: 10.1111/j.1574-6976.2010.00229.x.

Armbruster CE, Mobley HLT, Pearson MM. Pathogenesis of Proteus mirabilis infection. EcoSal Plus. 2018;8(1):10–1128. doi: 10.1128/ecosalplus.esp-0009-2017.

Ibrahim GJ, Laftaah BA. The Efficiency of Certain Amino Acids in regulating chABCI Gene Expression in Proteus mirabilis. Iraqi Journal of Science. 2024; 56(9). doi: 10.24996/ijs.2024.65.9.15.

Sabah Fakhry S, Noori Hammed Z, Abdul-elah Bakir W, Abdullah Laftaah ALRubaii B. Identification of methicillin-resistant strains of Staphylococcus aureus isolated from humans and food sources by Use of mecA 1 and mecA 2 genes in Pulsed field gel electrophoresis (PFGE (technique. Revis Bionatura 2022; 7 (2) 44. doi: 10.21931/RB/2022.07.02.44.

Saleh TH, Hashim ST, Abdulrazaq Al-Obaidi RA, AL-Rubaii BA. A biological study of chitinase produced by clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa and detection of chia responsible gene. International Journal of Research in Pharmaceutical Sciences. [Internet]. 2020; 11 (2):1318-1330. Available from: https://ijrps.com/home/article/view/805.

Al-Humairi RM, Muhsin HY, Ad’hiah AH. Severity of Coronavirus Disease 19: A Profile of Inflammatory Markers in Iraqi Patients. Malaysian Journal of Medicine Health Sciences. [Internet].2022; 18(1). 91-98. Available from: https://search.bvsalud.org/gim/resource/fr/wpr-979952.

Ali SM, Laftah BA, Al-Shammary AM, Salih HS. Study the role of bacterial neuraminidase against adenocarcinoma cells in vivo. AIP Conf Proc. 2021; 2372(1): 030009. doi: 10.1063/5.0067193.

Salih HS, Al-Shammari AM, Laftaah BA. Intratumoral co-administration of oncolytic newcastle disease virus and bacterial hyaluronidase enhances virus potency in tumor models. Journal of Global Pharma Technology. [Internet].2018; 10(10):303-310. Available from: http://www.jgpt.co.in/index.php/jgpt/article/view/1510/2077.

Bresam S, Alhumairi RM, Hade IM, Al-Rubaii BA. Genetic mutation rs972283 of the KLF14 gene and the incidence of gastric cancer. Biomedicine. 2023; 43(4):1256-60. doi: 10.51248/.v43i4.3112.

Al-Jumaily RM, AL-Sheakli II, Muhammed HJ, Al-Rubaii BA. Gene expression of Interleukin-10 and Foxp3 as critical biomarkers in rheumatoid arthritis patients. Biomedicine. 2023;43(4):1183-7. doi: 10.51248/.v43i4.3107.

Muhsin HY, Al-Humairi RM, Alshareef DQ, Ad'hiah AH. Interleukin-22 is up-regulated in serum of male patients with ankylosing spondylitis. The Egyptian Rheumatologist. 2022;44(4):351-355. doi: 10.1016/j.ejr.2022.07.002.

Sultan RS, Al Khayali BD, Abdulmajeed GM, Al-Rubaii BA. Exploring small nucleolar RNA host gene 3 as a therapeutic target in breast cancer through metabolic reprogramming. Oera Medica et Physiologica. 2023;10(4):36-47. doi: 10.24412/2500-2295-2023-4-36-47.

Hassoon AH. Evaluating the role of mitochondrial DNA quantification in blastocyst transfers potential. AIP Conference Proceedings 2022; 2386(1): doi: 10.1063/5.0067093.

Al-Maliki NS, Zedan ZK. miRNA-126 as a Biomarker for Cancer Stem Cells: Role in Chemotherapy Resistance in Iraqi Patients with Acute Myeloid Leukemia. Al-Rafidain Journal of Medical Sciences. 2024;6(1):195-199. doi: 10.54133/ajms.v6i1.577.


Переглядів анотації: 623
Завантажень PDF: 329
Опубліковано
2024-10-06
Як цитувати
Абдулла, М. М., & Аль-Рубаї, Б. А. Л. (2024). Вплив супернатанту Lactobacillus на експресію генів, асоційованих з роїнням Proteus mirabilis, ізольованого від пацієнтів з інфекціями сечової системи. Український Журнал Нефрології та Діалізу, (4(84), 39-48. https://doi.org/10.31450/ukrjnd.4(84).2024.05

Розділ
Оригінальні наукові роботи