Кількісне визначення рівнів експресії генів mexA та mexB у відповідь на інгібітор ефлюксних насосів PAβN у ципрофлоксацин-резистентних ізолятах Pseudomonas aeruginosa, виділених у пацієнтів з інфекцією сечової системи

  • Салва А. Абдул Хусейн Інститут генетичної інженерії та біотехнології післядипломної освіти, Університет Багдада, Багдад, Ірак https://orcid.org/0009-0000-3935-8200
  • Абдуламір М. Гаріб Інститут генетичної інженерії та біотехнології післядипломної освіти, Університет Багдада, Багдад, Ірак
Ключові слова: Pseudomonas aeruginosa, ефлюксні насоси, ген mexA, ген mexB, фенілаланін-аргінін β-нафтиламін, множинна резистентність, інфекції сечовивідних шляхів.

Анотація

Інфекції сечової системи (ІСС) є однією з найпоширеніших бактеріальних інфекцій у світі. Pseudomonas aeruginosa, грамнегативний опортуністичний патоген, є одним із п’яти найзначніших нозокоміальних бактерій і основним чинником ІСС. Це дослідження мало на меті кількісно оцінити рівні експресії генів ефлюксних насосів mexA та mexB у відповідь на інгібітор ефлюксних насосів фенілаланін-аргінін β-нафтиламін (PAβN) у ципрофлоксацин-резистентних ізолятах P. aeruginosa.

Методи. П’ятдесят зразків сечі було зібрано від пацієнтів з ІСС у різних лікарнях Багдада. Зразки безпосередньо культивували шляхом нанесення на диференційні середовища. Було ідентифіковано п’ять ципрофлоксацин-резистентних ізолятів P. aeruginosa, резистентність яких підтверджена методом дискової дифузії для визначення чутливості до антибіотиків. Метод мікродилюції в бульйоні використовували для визначення мінімальної інгібуючої концентрації (МІК) ципрофлоксацину (CIP) окремо та в комбінації з PAβN для оцінки інгібуючої активності PAβN. РНК екстрагували та очищали з бактеріальних ізолятів, після чого проводили зворотну транскрипцію та кількісну ПЛР для оцінки експресії генів, пов’язаних із ефлюксними насосами. Рівні експресії mexA та mexB вимірювали в присутності досліджуваних сполук за допомогою кількісної ПЛР.

Результати. Тестування на чутливість до антибіотиків показало, що ізоляти були резистентними до майже всіх протестованих антибіотиків, за винятком піперациліну-тазобактаму, який був ефективним проти 64% ізолятів. Жоден із п’яти відібраних ізолятів не виявив чутливості до ципрофлоксацину. МІК для ципрофлоксацину варіювала від 31,25 до 62,5 мг/л, тоді як суб-МІК у присутності PAβN значно знижувалася, варіюючи від 7,81 до 15,62 мг/л. Рівні експресії генів mexA та mexB значно знизилися в трьох із п’яти ізолятів при дії PAβN і ципрофлоксацину порівняно з ципрофлоксацином окремо, зі зниженням рівнів експресії з 1,319 до 0,574, з 0,159 до 0,008 та з 194,0 до 4,9 відповідно. Однак два ізоляти показали надмірну експресію цих генів.

Висновки. Присутність PAβN значно знизила МІК ципрофлоксацину в більшості ципрофлоксацин-резистентних ізолятів P. aeruginosa in vitro. Рівні експресії генів mexA та mexB знизились в більшості ізолятів при комбінованому використанні PAβN із ципрофлоксацином, що свідчить про те, що PAβN може підвищувати ефективність ципрофлоксацину. Ці результати вказують на те, що PAβN може бути перспективним допоміжним антимікробним агентом для лікування ІСШ, спричинених резистентними P. aeruginosa.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Salumi Z, Abood Z. Phenotypic diagnosis of efflux pump of Escherichia coli isolated from urinary tract infections. Iraq J biotechnol. [Internet]. 2022;21(2):21-31. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/473/352.

Ghafer A, Ghareeb AM, Al-Faisal AH. Association the allelic variation and SNP rs12917707 genotyping with UMOD serum level among Iraqi patients infected with uro-pathogenic Escherichia coli. Bionatura.2023;CSS1:1-12. doi: 10.21931/rb/css/2023.08.01.83.

Al-Mohammed TA, Mahmood HM. Carbapenem Resistance Related with Biofilm Formation and Pilin Genes in Clinical Pseudomonas aeruginosa Isolates. Iraqi J Pharm Sci. 2024;33(1):72-8. doi: 10.31351/vol33iss1pp72-78.

Lodise TP, Monique RB. Pseudomonas aeruginosa. MDR Gram- Negative Infections. [Internet].2019;2:7-27. Available from: https://www.accp.com/docs/bookstore/IDSAP/id2019b2_sample.pdf.

Shehab ZH, Mohammad TH, Tawfiq AA. Growth inhibition of Pseudomonas aeruginosa using products of some probiotic microorganisms and secondary metabolites of Commiphora myrrha extracts estimated by GC-MS technique. Baghdad Science Journal. 2024; 21(11):3463-75. doi: 10.21123/bsj.2024.9704.

Fadhil KH, Al-Mathkhury HJ. Gentamicin Variably Affects amrZ and rhl gene Expression in Swarmer Cells of Pseudomonas aeruginosa. Iraqi Journal of Science. 2022; 36(7):2884–90. doi: 10.24996/ijs.2022.63.7.12.

AL-Ameen MA, Ghareeb AM. Prevalence of Colistin Resistance in Pseudomonas aeruginosa Isolated from Burn Patients in Sulaymaniyah City. Iraqi journal of biotechnology. [Internet].2022;21(2):713-22. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/550.

Mohamad SM, Rostami S, Zamanzad B, Gholipour A, Drees F. Detection of exotoxins and antimicrobial susceptibility pattern in clinical Pseudomonas aeruginosa Isolates. Avicenna J Clin Microbiol Infect.2017;5(2):36-40. doi: 10.34172/ajcmi.2018.07.

El Zowalaty ME, Al Thani AA, Webster T J, El Zowalaty AE, Schweizer HP, Nasrallah GK. Pseudomonas Immunocompromised Patients: Relation to Initial Antibiotic Therapy and Survival Jpn. Journal of Infectious Diseases. 2015;69: 91–96.

Sulaiman SD, Abdulhasan GA. Curcumin as Efflux Pump Inhibitor Agent for Enhancement Treatment Against Multidrug Resistant Pseudomonas aeruginosa Isolates. Iraqi Journal of Science. 2020;61(1):59-67. doi: 10.24996/ijs.2020.61.1.6.

AL-Fridawy RA, Al-Daraghi WA, Alkhafaji MH. Isolation and identification of multidrug resistance among clinical and environmental Pseudomonas aeruginosa isolates. Iraqi journal of biotechnology. [Internet].2020;19(2):37-45. Available from: https://jige.uobaghdad.edu.iq/index.php/IJB/article/view/400/302.

Poole K. Efflux-mediated multiresistance in Gram-negative bacteria. Clin Microbiol Infect.2004;10(1):12-26. doi: 10.1111/j.1469-0691.2004.00763.x.

Pesingi PV, Singh BR, Pesingi PK, Bhardwaj M, Singh SV, Kumawat M, et al. MexAB-OprM efflux pump of Pseudomonas aeruginosa offers resistance to carvacrol: A herbal antimicrobial agent. Front Microbiol. 2019;10:2664. doi: 10.3389/fmicb.2019.02664.

Eshra KA, Shalaby MM. Efflux pump inhibition effect of curcumin and phenylalanine arginyl β-naphthylamide (PAβN) against multidrug resistant Pseudomonas aeruginosa isolated from burn infections in Tanta University Hospitals. The Egyptian Journal of Medical Microbiology (EJMM). [Internet].2017;26(1):113–119. Available from: https://www.researchgate.net/publication/315739790_Efflux_Pump_Inhibition_effect_of_Curcumin_and_Phenylalanine_Arginyl_b-Naphthylamide_PAbN_against _Multidrug_Resistant_Pseudomonas_aeruginosa_Isolated_from_Burn_Infections_in_Tanta_University_Hospitals.

Rampioni G, Pillai CR, Longo F, Bondì R, Baldelli V, Messina M, et al. Effect of efflux pump inhibition on Pseudomonas aeruginosa transcriptome and virulence. Scientific reports. 2017;7(1):11392. doi: 10.1038/s41598-017-11892-9.

El-Shaer S, Shaaban M, Barwa R, Hassan R. Control of quorum sensing and virulence factors of Pseudomonas aeruginosa using phenylalanine arginyl β-naphthylamide. J Med Microbiol.2016;65(10):1194-204. doi: 10.1099/jmm.0.000327.

Van Giau V, An SS, Hulme J. Recent advances in the treatment of pathogenic infections using antibiotics and nano-drug delivery vehicles. Drug Des Devel Ther.2019;13:327-43. doi: 10.2147/DDDT.S190577.

Levinson WE. Review of medical microbiology and immunology. McGraw-Hill Education; 2018.

Yaseen NN, Ahmed DA. Detection of mexB multidrug efflux gene in some local isolates of Pseudomonas aeruginosa. Iraqi Journal of Science. 2023;64(1)111-118. doi: 10.24996/ijs.2023.64.1.11.

Ohikhena FU, Wintola OA, Afolayan AJ. Evaluation of the antibacterial and antifungal properties of Phragmanthera capitata (Sprengel) Balle (Loranthaceae), a mistletoe growing on rubber tree, using the dilution techniques. The Scientific World Journal. 2017;2017(1):9658598. doi: 10.1155/2017/9658598.

Livak KJ, Schmittgen TD. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. Methods.2001;25(4):402-8. doi: 10.1006/meth.2001.1262.

Mohsin MR, Al-Rubaii BAL. Bacterial growth and antibiotic sensitivity of Proteus mirabilis treated with anti-inflammatory and painkiller drugs. Biomedicine. 2023;43(2):728–34. doi: 10.51248/.v43i02.2693.

Ibrahim GJ, Laftaah BA. The Efficiency of Certain Amino Acids in regulating chABCI Gene Expression in Proteus mirabilis. Iraqi Journal of Science. 2024; 56(9). doi: 10.24996/ijs.2024.65.9.15.

Abdullah MM, AL-Rubaii BAL. Effect of Lactobacillus supernatant on swarming-related gene expression in Proteus mirabilis isolated from urinary tract infections. Ukr J Nephrol Dial. 2024;4(84):39-48. doi: 10.31450/ukrjnd.4(84).2024.05.

Saleh TH, Hashim ST, Malik SN, AL-Rubaii BA. Down-regulation of flil gene expression by Ag nanoparticles and TiO2 nanoparticles in pragmatic clinical isolates of Proteus mirabilis and Proteus vulgaris from urinary tract infection. Nano Biomed. Eng. 2019;11(4):321-32. doi: 10.5101/nbe.v11i4.p321-332.

Husain AG, Alrubaii BA. Molecular detection and expression of virulence factor encoding genes of Pseudomonas aeruginosa isolated from clinical samples. Biomedicine. 2023;43(5):1514-9. doi: 10.51248/.v43i5.3263.

Mohamed A, Abdelhamid F. Antibiotic susceptibility of Pseudomonas aeruginosa isolated from different clinical sources. Zagazig Journal of Pharmaceutical Sciences. 2020;28(2):10-7. doi:10.21608/zjps.2020.21777.1005.

Boushra M, A Hassuna N, FM Gad G, A Ibrahem R, GFM Waly N. Detection of possible aminoglycosides resistance mechanisms in Pseudomonas aeruginosa resistant isolates. Novel Research in Microbiology Journal.2024;8(4):2526-41. doi: 10.21608/NRMJ.2024.305843.1657.

Ghanem SM, Abd El-Baky RM, Abourehab MA, Fadl GF, Gamil NG. Prevalence of quorum sensing and virulence factor genes among Pseudomonas aeruginosa isolated from patients suffering from different infections and their association with antimicrobial resistance. Infect Drug Resist.2023;16:2371-85. doi: 10.2147/IDR.S403441.

Hasan SA, Najati AM, Abass KS. Prevalence and antibiotic resistance of “pseudomonas aeruginosa” isolated from clinical samples in Kirkuk City, Iraq. Eurasia J Biosci. 2020;14(1):1821-25.

Abdulameer HH, Abdulhassan GA. Occurrence of Point Mutations in gyrA and parC Genes of Ciprofloxacin-Resistant Pseudomonas aeruginosa Isolated from Burn Infections. Iraqi Journal of Science.2021;62(10):3457–66. doi: 10.24996/ijs.2021.62.10.5.

Martins M, Viveiros M, Couto I, Costa SS, Pacheco T, Fanning S, et al. Identification of efflux pump-mediated multidrug-resistant bacteria by the ethidium bromide-agar cartwheel method. In vivo. [Internet].2011;25(2):171-8. Available from: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/21471531/.

Strateva T, Yordanov D. Pseudomonas aeruginosa–a phenomenon of bacterial resistance. J Med Microbiol. 2009;58(9):1133-48. doi 10.1099/jmm.0.009142-0.

Abdolhosseini M, Zamani H, Salehzadeh A. Synergistic antimicrobial potential of ciprofloxacin with silver nanoparticles conjugated to thiosemicarbazide against ciprofloxacin resistant Pseudomonas aeruginosa by attenuation of MexA-B efflux pump genes. Biologia. 2019;74:1191-96. doi: 10.2478/s11756-019-00269-0.

Faridi F, Abbasi S , Shoja S, Bahador N. Antibacterial Activity of Chitosan and PAβN on MexAB Expression in Clinical Isolates of Ciprofloxacin Resistant Pseudomonas aeruginosa. Jundishapur J Microbiol. 2021;14(5):e115652. doi: 10.5812/jjm.115652.

Nalca Y, Jänsch L, Bredenbruch F, Geffers R, Buer J, Häussler S. Quorum-sensing antagonistic activities of azithromycin in Pseudomonas aeruginosa PAO1: a global approach. Antimicrob Agents Chemother. 2006;50(5):1680-88. doi: 10.1128/AAC.50.5.1680–1688.2006.

Okasha HA. Detection of Efflux Pumps Overexpression in Flouroquinolone Resistant Pseudomonas aeruginosa. Egyptian Journal of Medical Microbiology. [Internet].2021; 30(2):27-34. Available from: https://journals.ekb.eg/article_191681_a442dbc1e11aa8c504fc3387c667d148.pdf.

Al-Khafaji ZH, Saeed YS. Investigate the Antimicrobial Activity of Methanolic Extract of Cladophora glomerata. Journal of Communicable Diseases.2024;56(1):8-12. doi: 10.24321/0019.5138.202402.

Al-Asady IN. Antibacterial activity of Spirulina platensis on some pathogenic bacteria. Biomedicine.2023;43(5):1508-13. doi: 10.51248/.v43i5.3257.

Jalil IS, Mohammad SQ, Mohsen AK, Al-Rubaii BA. Inhibitory activity of Mentha spicata oils on biofilms of Proteus mirabilis isolated from burns. Biomedicine.2023; 43(02):748-52. doi: 10.51248/.v43i02.2699.

Al-saidi M, Al-Bana RJ, Hassan E, Al-Rubaii BA. Extraction and characterization of nickel oxide nanoparticles from Hibiscus plant using green technology and study of its antibacterial activity. Biomedicine. 2022;42(6):1290-5. doi: 10.51248/.v42i6.2071.

Algabar FA, Ahmed DS, Abbod LS, Al-Obaidi MA. Antibacterial Synergy: Assessing the Impact of Nano Zirconium Oxide Particles in Combination with Selected Antibiotics on Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae Isolates from Urinary Tract Infections. Indian J Microbiol.2024;64(4):1894-1902. doi: 10.1007/s12088-024-01271-0.

Ali MA, Al-Rubaii BA. Study of the Effects of Audible Sounds and Magnetic Fields on Staphylococcus aureus Methicillin Resistance and mecA Gene Expression. Trop J Nat Prod Res.2021;5(5):825-30. doi: 10.26538/tjnpr/v5i5.6.


Переглядів анотації: 394
Завантажень PDF: 249
Опубліковано
2025-06-14
Як цитувати
А. Абдул Хусейн, С., & Гаріб, А. М. (2025). Кількісне визначення рівнів експресії генів mexA та mexB у відповідь на інгібітор ефлюксних насосів PAβN у ципрофлоксацин-резистентних ізолятах Pseudomonas aeruginosa, виділених у пацієнтів з інфекцією сечової системи. Український Журнал Нефрології та Діалізу, (2(86), 35-43. https://doi.org/10.31450/ukrjnd.2(86).2025.04

Розділ
Оригінальні наукові роботи