Імунологічні маркери кандидо-асоційованої інфекції сечової системи у хворих на уролітіаз: роль інтерлейкінів і компонента комплементу

  • Бан Бадран Аднан Кафедра біології, Коледж наук, Тікритський університет, Тікрит, Ірак
  • Айяд М. Ґайдан Кафедра біології, Коледж наук, Тікритський університет, Тікрит, Ірак https://orcid.org/0000-0003-4660-9834
  • Хавазін Ахмед Абід Кафедра біології, Коледж наук, Тікритський університет, Тікрит, Ірак
Ключові слова: інфекції сечової системи шляхів, уролітіаз, Candida spp., кандидоз.

Анотація

Інфекції сечової  системи (ІСС) є поширеними серед пацієнтів з уролітіазом. Бактеріальні патогени традиційно пов’язані з ІСС, однак грибкові інфекції отримують дедалі більше визнання, особливо у пацієнтів із наявними урологічними порушеннями.

Метою цього одномоментного дослідження було визначити взаємозв’язок між ІСС, спричиненою Candida (Candida spp.) та концентрацією інтерлейкінів (ІЛ) -6, -17, -22 і компонента комплементу 2 (C2) і 4 (С4) у пацієнтів з уролітіазом.

Методи. У дослідження включено 100 зразків сечі від пацієнтів з уролітіазом та 20 зразків сечі від здорових добровольців (контрольна група). Визначення Candida spp. проводили шляхом посіву на щільне поживне середовище Сабуро (Sabouraud dextrose agar, SDA) з подальшою оцінкою ростових характеристик колоній. Ідентифікацію підтверджували мікроскопією мазків, забарвлених за Грамом та лактофенол-бавовняним синім (lactophenol cotton blue).  Концентрацію ІЛ-6, -17, -22, а також компонентів комплементу C2 і C4 у сечі визначали імуноферментним методом за допомогою комерційних наборів згідно з інструкціями виробника.

Результати. Найпоширенішим видом була Candida albicans (C. albicans) (59,5%), а найрідше визначався Candida krusei (C. krusei) (6,3%). Рівні ІЛ-6, -17 та -22 були статистично-значущо підвищеними (P < 0,05) у пацієнтів з уролітіазом (19,6 ± 2,4 пг/мл; 77,8 ± 16,34 пг/мл та 93,5 ± 11,9 пг/мл відповідно) порівняно з контрольною групою (11,5 ± 3,7 пг/мл; 22,5 ± 6,41 пг/мл та 38,6 ± 9,4 пг/мл, відповідно). Проте, рівні C2 були достовірно зниженими (P < 0,05) у пацієнтів порівняно з контрольною групою (51,03 ± 9,44 нг/мл проти 195,21 ± 13,8 нг/мл).

Висновки. Отримані дані свідчать, що Candida-асоційовані ІСС у пацієнтів з уролітіазом супроводжуються вираженою місцевою імунною відповіддю та можуть погіршувати перебіг основного захворювання. визначення рівнів ІЛ-6, -17, -22 і C2 у сечі може бути корисним уякості  додаткових біомаркерів кандидозної інфекції та інтенсивності запального процесу, що потенційно дозволить покращити діагностику та стратифікацію ризику ускладнень у цій категорії хворих.

Завантаження

Дані завантаження ще не доступні.

Посилання

Flores-Mireles AL, Walker JN, Caparon M, Hultgren SJ. Urinary tract infections: Epidemiology, mechanisms of infection and treatment options. Nat Rev Microbiol. 2015;13(5):269–84. doi: 10.1038/nrmicro3432.

Johnson JR. Definitions of complicated urinary tract infection and pyelonephritis. Clin Infect Dis. 2017;64(3):390. doi: 10.1093/cid/ciw712.

Lewis AJ, Richards AC, Mulvey MA. Invasion of host cells and tissues by uropathogenic bacteria. Microbiol Spectr. 2016;4(6):359–81. doi: 10.1128/microbiolspec.UTI-0026-2016.

Abdullah MM, AL-Rubaii BA. Effect of Lactobacillus supernatant on swarming-related gene expression in Proteus mirabilis isolated from urinary tract infections. Ukrainian Journal of Nephrology and Dialysis. 2024;4(84):39-48. doi: 10.31450/ukrjnd.4(84).2024.05.

Ibrahim GJ, Laftaah BA. The efficiency of certain amino acids in regulating chABCI gene expression in proteus mirabilis. Iraqi J of Science. 2024; 65(9):4983-92. doi: 10.24996/ijs.2024.65.9.15.

Husain AG, Alrubaii BA. Molecular detection and expression of virulence factor encoding genes of Pseudomonas aeruginosa isolated from clinical samples. Biomedicine. 2023;43(5):1514-9. doi: 10.51248/.v43i5.3263.

Zagaglia C, Ammendolia MG, Maurizi L, Nicoletti M, Longhi C. Urinary tract infections caused by uropathogenic Escherichia coli strains—new strategies for an old pathogen. Microorganisms. 2022;10(7):1425. doi: 10.3390/microorganisms10071425.

Soundararajan P, Mahesh R, Ramesh T, Begum HV. Effect of Aerva lanata on calcium oxalate urolithiasis in rats. Indian J Exp Biol. [Internet]. 2006;44:981-6. Available from: https://europepmc.org/article/med/17176671.

Vijaya T, Sathish KM, Ramarao NV, Babu NA, Ramarao N. Urolithiasis and its causes—short review. J Phytopharmacol. 2013;2(3):1-6. doi: 10.31254/phyto.2013.21309.

Behzadi P, Behzadi E, Ranjbar R. Urinary tract infections and Candida albicans. Cent Eur J Urol. 2015;68(1):96-101. doi: 10.5173/ceju.2015.01.474.

Mohammed IS, Al-Bayati A, Hashim ST, Saleh TH, Laftaah BA, Hasoon BA. The effect of zinc oxide on inhibition of Candida albicans isolated from leukemia patients. Microbial Biosystems. 2025;10(2):202-212. doi: 10.21608/mb.2025.366586.1265.

Yapar N. Epidemiology and risk factors for invasive candidiasis. Ther Clin Risk Manag. 2014;10:95–105. doi: 10.2147/TCRM.S40160.

Bilal H, Shafiq M, Hou B, Islam R, Khan MN, Khan RU, et al. Distribution and antifungal susceptibility pattern of Candida species from mainland China: a systematic analysis. Virulence. 2022;13(1):1573–89. doi: 10.1080/21505594.2022.2123325.

Ashman RB, Farah CS, Wanasaengsakul S, Hu Y, Pang G, Clancy RL. Innate versus adaptive immunity in Candida albicans infection. Immunol Cell Biol. 2004;82(2):196–204. doi: 10.1046/j.0818-9641.2004.01217.x.

Ferwerda B, Ferwerda G, Plantinga TS, Willment JA, van Spriel AB, Venselaar H, et al. Human dectin-1 deficiency and mucocutaneous fungal infections. N Engl J Med. 2009;361(18):1760–7. doi: 10.1056/NEJMoa0901053.

Tuite A, Mullick A, Gros P. Genetic analysis of innate immunity in resistance to Candida albicans. Genes Immun. 2004;5(8):576–87. doi: 10.1038/sj.gene.6364130.

Othman KI, Shorish MA, Belan A, Mjda M. Isolation and identification of Candida spp. from urine and antifungal susceptibility test. Iraqi J Sci. [Internet]. 2018;59(4B):1981–8. Available from: https://ijs.uobaghdad.edu.iq/index.php/eijs/article/view/554.

Altayyar IA, Alsanosi AS, Osman NA. Prevalence of vaginal candidiasis among pregnant women attending different gynecological clinics in South Libya. Eur J Exp Biol. [Internet]. 2016;6(3):25–9. Available from: https://www.primescholars.com/articles/prevalence-of-vaginal-candidiasis-among-pregnant-women-attending-different-gynecological-clinic-at-south-libya.pdf.

Ghaddar N, El Roz A, Ghssein G, Ibrahim JN. Emergence of vulvovaginal candidiasis among Lebanese pregnant women: prevalence, risk factors, and species distribution. Infect Dis Obstet Gynecol. 2019;2019:1–8. doi: 10.1155/2019/5016810.

Sahal G, Bilkay IS. Distribution of clinical isolates of Candida spp. and antifungal susceptibility of high biofilm-forming Candida isolates. Rev Soc Bras Med Trop. 2018;51(5):644–50. doi: 10.1590/0037-8682-0136-2018.

Mohsin ZA, Ali WS. Antagonistic activity of bacteriocin-producing Lactobacillus against Candida spp. Iraqi J Sci. 2021;62(5):2153–62. doi: 10.24996/ijs.2021.62.7.4

.

Acharya T, Hare J. Sabouraud agar and other fungal growth media. Laboratory Protocols in Fungal Biology: Current Methods in Fungal Biology. [Internet]. 2022:69–86. Available from: https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-3-030-83749-5_2.

Larone DH. Medically important fungi: a guide to identification. 5th Edition. Washington, DC: ASM Press; 2011:510 p.

Singh S. Microbial assay techniques. In: Medical Microbiology. 2022 Apr 4. p. 177.

Thammahong A, Kiatsurayanon C, Edwards SW, Rerknimitr P, Chiewchengchol D. The clinical significance of fungi in atopic dermatitis. Int J Dermatol. 2020;59(8):926–35. doi: 10.1111/ijd.14941.

Saeed AS, Saadullah AA. Isolation, identification, and antifungal susceptibility testing of Candida species from dermatologic specimens in Duhok Province. ZANCO J Pure Appl Sci. 2019;31(4):1-8. doi: http://dx.doi.org/10.21271/zjpas.

Musa SAM, Magzoub M, Alhassan ASA, Hammad NMA. Prevalence of Candida spp. isolated from urine samples of pregnant women from Kassala State, Sudan. Am J Microbiol Res. 2020;8(3):79–82. doi: 10.12691/ajmr-8-3-1.

Romani L, Mencacci A, Cenci E, Spaccapelo R, Toniatti C, Puccetti P, et al. Impaired neutrophil response and CD4+ T helper cell 1 development in interleukin-6-deficient mice infected with Candida albicans. J Exp Med. 1996;183(4):1345–55. doi: 10.1084/jem.183.4.1345.

Van Enckevort FHJ, Netea MG, Hermus ARMM, Sweep CGJ, Meis FGM, Van der Meer JWM, et al. Increased susceptibility to systemic candidiasis in interleukin-6 deficient mice. Med Mycol. 1999;37(6):419-26. doi: 10.1046/j.1365-280x.1999.00247.x.

Li Z, Lu G, Meng G. Pathogenic fungal infection in the lung. Front Immunol. 2019;10:1524. doi: 10.3389/fimmu.2019.01524.

Finkina EI, Balandin DV, Ignatova AA, Kanushkina MD, Egorova EA, Voropaev AD, et al. Antifungal activity, structural stability, and immunomodulatory effects on human immune cells of defensin from the lentil Lens culinaris. Membranes. 2022;12(9):855. doi: 10.3390/membranes12090855.

Tangye SG, Puel A. The Th17/IL-17 axis and host defense against fungal infections. J Allergy Clin Immunol Pract. 2023;11(6):1624–34. doi: 10.1016/j.jaip.2023.04.015.

Yano J, Kolls J, Happel KI, Wormley F, Wozniak L, Fidel PJ. The acute neutrophil response mediated by S100 alarmins during vaginal Candida infections is independent of the Th17-pathway. PLoS One. 2012;7(9):e46311. doi: 10.1371/journal.pone.0046311.

Fidel PL. Immunity in vaginal candidiasis. Curr Opin Infect Dis. 2005;18(1):107–11. doi: 10.1097/01.qco.0000160897.74492.a3.

Khalaf ZA, Al-Bashar SH, Ibrahim TK, Al-Rubaii BAL. The correlation among IL-37, IL-6, and IL-10 gene expression in patients infected with Helicobacter pylori. East Ukr Med J. 2025;13(1):103-110 doi: 10.21272/eumj.2025;13(1):103-110.

Jawad NK, Numan AT, Ahmed AG, Saleh TH, Al-Rubaii BA. IL-38 gene expression: A new player in Graves’ ophthalmopathy patients in Iraq. Biomedicine. 2023;43(1):210-5. doi: 10.51248/.v43i1.2027.

Jiad AL, Ismael MK, Salih TA, Malik SN, Al-Rubaii BA. Genotyping and evaluation of interleukin-10 and soluble HLA-G in abortion due to toxoplasmosis and HSV-2 infections. Annals of parasitology. 2022;68(2):385-390. doi: 10.17420/ap6802.444.

Liang D, Liu C, Yang M. The association between C-reactive protein levels and the risk of kidney stones: a population-based study. BMC Nephrol. 2024;25(1):39. doi: 10.1186/s12882-024-03476-3.

McAleer JP, Kolls JK. Directing traffic: IL-17 and IL-22 coordinate pulmonary immune defense. Immunol Rev. 2014;260(1):129-44. doi: 10.1111/imr.12183.

Heidenreich F, Dierich MP. Candida albicans and Candida stellatoidea, in contrast to other Candida species, bind iC3b and C3d but not C3b. Infect Immun. 1985;50(2):598–600. doi: 10.1128/iai.50.2.598-600.1985.

Atallah RB, Osama AH, Hesham SA, Hagar Ali MA. Assessment of complement (C2 & C4) in patients with recurrent candidal infections. Egypt J Hosp Med. 2019;74(5):994–1002. doi:10.21608/ejhm.2019.25812.

Amna NJ, Hadeel AM, Kalid AH. Estimation of immunoglobulins and complements and using enzyme-linked immunosorbent assay in identification of vulvovaginal candidiasis. Baghdad Sci J. 2009;6(3):427–31. doi: 10.21123/bsj.2009.6.3.427-431.

Dunkelberger J, Song WC. Complement and its role in innate and adaptive immune responses. Cell Res. 2010;20:34–50. doi: 10.1038/cr.2009.139.

Jassim TS, Al-Fendi AM, Hashim ST, Saleh TH, Al-Rubaii BA. Molecular detection of Rubella virus (1E genotype) in clinical sample of pregnant women, and it’s related to abortion. Reproductive health of woman. [Internet]. 2025;23(3):113-8. Available from: http://nbuv.gov.ua/UJRN/rzzh_2025_3_17.

Jassim TS, Talib SS, Jaber NR, Sahib DH, Ali RW, Al-Rubaii B. Impact of hepatitis C virus on IFITM3 gene expression: A comprehensive analysis incorporating serological detection and viral load quantification via qPCR. Polymers in Medicine. 2025;55(1):21-30. doi: 10.17219/pim/199333.

Husain AG, Alrubaii BA. Molecular detection and expression of virulence factor encoding genes of Pseudomonas aeruginosa isolated from clinical samples. Biomedicine. 2023;43(5):1514-9. doi: 10.51248/.v43i5.3263.

Al-Rubii BA. Cloning LasB gene of Pseudomonas aeruginosa elastase 10104-2aI in E. coli BL21 and E. coli DH5α and investigated their effect on the stripping of Vero cells. Pakistan J Biotechnol. [Internet]. 2017;14(4):697-705. Available from: https://www.researchgate.net/publication/322303302.


Переглядів анотації: 247
Завантажень PDF: 137
Опубліковано
2025-12-08
Як цитувати
Аднан, Б. Б., Ґайдан, А. М., & Абід, Х. А. (2025). Імунологічні маркери кандидо-асоційованої інфекції сечової системи у хворих на уролітіаз: роль інтерлейкінів і компонента комплементу. Український Журнал Нефрології та Діалізу, (4(88), 31-38. https://doi.org/10.31450/ukrjnd.4(88).2025.04

Розділ
Оригінальні наукові роботи